المواد والطرق Materials and
Methods
تمّ شراء الفيكول Ficoll-Paque من شركة Amersham Biosciences، والأضداد من شركة BD Biosciences (بما في ذلك
الأضداد وحيدة النسيلة الفأريّة الخالية من الأزيد الموجهة نوعيّاً للمستضد البشري CD3 "OKT3"، والضّدين
وحيدي النّسيلة المفلورين المستعملين في الجريان الخلوي APC- anti CD4 mAbs وPE-anti CD25). تمّ
الحصول على عتيدة عزل الخلايا التّائيّة البشريّة المساعدة Human CD4+ Cell Enrichment kit والمغناطيسEasySep™ Magnet من شركة Stem Cell Technologies.
أُجريت هذه
الدراسة في مخابر كلية الطب في جامعة بنسلفانيا في الولايات المتحدة الأمريكية
ومخابر الهيئة العامة للتقانة الحيوية في دمشق في العامين 2010 و2011.
تنقية الخلايا
التّائيّةCD4+ CD4+ T cell purification
بعد الحصول على الموافقة المستنيرة لمتبرعين أصحاء (7 أفراد)،
جرى بزل الدّم المحيطي إلى أنابيب تحتوي الهيبارين، وعُزلت الخلايا
وحيدات النّوى (PBMCs) بتنبيذها بسرعة 400 g مدّة 30 دقيقة على مدروج فيكول Ficoll-Paque. تلت هذه الخطوة تنقية الخلايا
البشريّة التائيّة من النمط CD4+ بطريقة الانتقاء السلبي،
حيث حُضنت الكريات
البيض مع مزيجٍ من أضداد وحيدة النسيلة monoclonal مقرونة بالبيوتين وموجهة للخلايا اللا تائيّة كافةً، بما في ذلك أضدادCD14,
CD16, CD19, CD36, CD56, CD123, TCR ?/delta, CD235a، وكذلك للخلايا
التّائيّة السّامة خلوياً CD8+. حُضِنَ مزيج الخلايا والأضداد مع
حبيبات حديديّة ملبّسة بأضداد ثانويّة موجهة ضد البيوتين، وجرى إخضاع المزيج لحقلٍ
مغناطيسي باستعمال مغناطيس EasySep™ Magnet. قُلِبَ ]المغناطيس + الأنبوب[ ممّا
أدّى إلى احتجاز الخلايا اللا تائيّة (الخلايا البائيّة، والخلايا القاتلة
الطبيعيّة NK،
والخلايا التّغصنيّة/ المتغصّنة dendritic cells، والوحيدات، والمحببات، وكريات الدّم الحمر)، بالإضافةً إلى الخلايا التّائيّة CD8+ في الأنبوب، في حين بقيت الخلايا التائيّة غير الموسومة بأيّ ضدّ
(أي الخلايا CD4+) حرّةً وجُمع السّائل المنسكب في أنابيب عقيمة.
الجريان/التّدفق الخلوي Flow
Cytometry
جرت تنقية جمهرتي الخلايا التّائيّة من
النمطين CD4+CD25- CD4+CD25hi/bright باستعمال الفرز بالجريان الخلويFlow cell sorting وذلك بعد حضن الخلايا التّائيّة CD4+ المنقّاة في
الخطوة أعلاه، مع ضدٍّين موسومين موجّهين
لـ CD4 وCD25. حيث وزّعت الخلايا على الأنابيب المخصّصة للجريان الخلوي (2 x 105/الأنبوب)،
وغسلت بدارئة PBS يحتوي 2% FBS + EDTA، وبعثرت الخلايا في 100 مكل من الدارئة، وحُضنت مع
أضداد وحيدة النسيلة mAb موسومة بـ allophycocyanin-Cy7 موجّهة ضد CD4 (APC Anti-CD4 mAb) وأضداد موسومة بـ PE موجهة ضد CD25 (PE anti-CD25 mAb) وذلك مدّة
نصف ساعة في الظلام، وغُسلت الخلايا بـ 3 مل من الدارئة لإزالة الفائض من الأضداد
غير المرتبطة. مُررت الخلايا المصونة عبر بوابة منطقتي الانتثار الأمامي والجانبي forward andside scatter areas (FSC-A & SSC-A)، وجرى فرز
الخلايا بصورة عقيمة ضمن بوابتين كلتيهما إيجابيتي CD4؛ الأولى سلبيّة الـ CD25 (CD25-) والثانية
إيجابيّة بشدّة لـ CD25 (CD25hi) وذلك
باستعمال FACSAria وBD FACSDiva software (كلاهما من BD Biosciences, San Jose, CA).
مقايسة كبت تكاثر الخلايا المستفعلة وإنتاجها للانترلوكين-2 في المختبر
وزّعت الخلايا التّائيّة المستفعلة CD4+CD25- بأعداد
متساوية (5x105 خلية/البئر) في آبار زرع خلويّ مدوّرة القاع، وأضيفت الخلايا المنظِّمة Tregs بأعدادٍ
متزايدة (0، 0.6، 12.5، 25، 50 x 104 خلية/البئر). تمّ تفعيل الخلايا
بإضافة حبيبات حديديّة ملبّسة بأضداد فأرية موجهة ضد المستضدين السّطحيين البشريينCD3 (OKT3) وCD28 (anti-CD28). حُضنت
الخلايا في الوسط الزّرعي DMEM المزوّد بـ 10% من مصل الجنين البقري FBS وبدرجة
حرارة 37 درجة مئويّة. بعد انقضاء 48 ساعة، أُضبف ثيميدين موسوم بـ H3 بتركيز يبلغ 1 ميكروكوري mCi في البئر،
ومن ثمّ حُصدت الخلايا بعد 64 ساعة وقيس اندخال الـ 3H-thymidine باستعمال العدّادة Betaplate liquid scintillation
counter (من شركة Wallac Oy, Turku, Finland). أجريت
الحسابات لتقدير نسبة الكبت باستعمال المعادلة التالية: النّسبة المئويّة للكبت (% supp)= ](cpm للخلايا
المستفعلة بمفردها –cpm للخلايا المستفعلة المعالجة مع الخلايا Tregs) /cpm للخلايا
المستفعلة بمفردها) x[100.
أمّا في التجارب
التي هدفت إلى تقييم إنتاج الانترلوكين 2 (IL-2)، فلقد جرى تفعيل
الخلايا في أطباق الزرع بالطريقة الموصوفة أعلاه، وقيس IL-2 في الوسط
الزرعي لتقصي تراكيز الـ IL-2 بعد 24 ساعة باستعمال عتيدة ELISA (R&D systems) وتبعاً
لتعليمات المصنّع.
التّحليل الإحصائي
استخدم اختبار ستيودنت ثنائي الذّيلtwo-tailed T-Test)) لتقييم الفروق
بين المجموعات، وعُدّ الفارق معتدّاً به إحصائيّاً إذا كانت قيمة P-value< 0.05 )بمستوى ثقة قدره 95%).
النتائج Results
تنقية الخلايا التّائيّة المنظِّمة Tregs والمستفعلة effector T cells
بعد قيامنا بعزل الخلايا المساعدة CD4+ بطريقة
الانتقاء السّلبي، وسمت الخلايا المنقّاة بأضدادٍ مفلورةٍ موجهةٍ للمستضدين
السّطحيين CD4 وCD25،
حيث بيّن الجريان الخلوي أنّ متوسط نسبة الخلايا المنظِّمة في المحضرات كان يقارب
الـ 14.5% من مجمل الخلايا التّائيّة المساعدة CD4+ T cells المنقّاة. تمّ فرز تحت جمهرتين خلويتين إيجابيّتي CD4 تفريقيّاً، بناءً على مستوى التّعبير عن المستضد
السّطحي CD25 وباستعمال البوابتين المبيّنتين في الشّكل 1. كانت
نقاوة تحت جمهرتي الخلايا التّائيّة المنظِّمة TregCD4+CD25hi/bright والخلايا المستفعلة تفوق الـ 99%
في التّجارب التي قمنا بإجرائها جميعها. ويوضح الشّكل 1 نتائج الجريان الخلوي
لإحدى التّجارب التي وصلت نقاوة Treg فيها إلى > 99.7% وتجاوزت
نقاوة الخلايا المستفعلة نسبة تجاوزت الـ 99.6%.